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明胶酶谱分析试剂盒

明胶酶谱分析试剂盒

产品编号:RTD6143

产品规格:50次

数量
价格 ¥1500


明胶酶谱分析试剂盒

      Gelatin Zymography Analysis Kit    Ver.710278

货号

名称

规格

RTD6143

明胶酶谱分析试剂盒

50


产品组成:

货号

名称

规格

保存

RTD6143-01

4%浓缩胶聚合溶液A2×)

40 ml

4

RTD6143-02

4%彩色浓缩胶溶液B2×)

40 ml

4

RTD6143-03

10%分离胶聚合溶液A2.5×)

100 ml

4

RTD6143-04

10%分离胶胶溶液B2×)

125 ml

4

RTD6143-05

10×明胶底物

30 ml

RT (配制后-20)

RTD6143-06

10×复性缓冲液

250 ml

4

RTD6143-07

10×孵育缓冲液

500 ml

4

RTD6143-08

胶原酶阳性对照

0.5 ml

-20

RTD6202

FastBlue蛋白染色液

500 ml

RT

PL112

5×蛋白上样缓冲液 (变性,非还原)

1 ml

-20

TG120P

5×Tris-甘氨酸-SDS电泳缓冲液(干粉)

1 L

RT

AP020P

APS(干粉)

0.5 g

RT (配制后-20)

TA0761

TEMED

0.5 ml

4,避光

说明书

一份

产品简介:

基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinase, MMP)是一种锌依赖性酶,能切割细胞外基质成分,能在一定条件下水解明胶。细胞内的MMP以无活性的酶原形式分泌,活化后能够降解细胞外基质的胶原蛋白,通过影响细胞外基质,参与胚胎发育、形态发生、组织重塑等过程,并参与炎症、肿瘤、心血管、神经等许多疾病过程。血浆与组织中的MMP-2、MMP-9参与各种生理与病理过程,其在临床诊断和治疗中的意义日益受到重视。

本试剂盒采用酶谱法(Zymography)检测MMP-2、MMP-9 活性,其基本原理和程序是:制备含有胶原酶底物明胶的SDS-PAGE 凝胶,含蛋白酶的样品在此凝胶中进行电泳,电泳时,SDS与样本中的MMP可逆性结合,导致MMP氢键和疏水键被破坏而不能发挥分解明胶的作用。电泳结束后取出凝胶与孵育溶液孵育,MMP恢复活性,在其迁移位置水解凝胶中的明胶,考马斯亮蓝染色后凝胶中由于含底物蛋白而被深染,形成深色背景,但在有蛋白酶条带的位置,蛋白酶将降解凝胶中的底物蛋白,因而不被染色而形成透亮白色区域,从而能同时指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶谱)及活性,其强弱与MMP活性呈正比。

本试剂盒提供明胶酶谱分析的全套试剂,试剂盒可进行50 次标准胶(8×10 cm)检测,如果小胶加样孔为10~15个,则总计可检测500~750 个样品。试剂盒配套有胶原酶阳性对照,可以有效分解明胶,方便判断凝胶及电泳体系是否有问题。

贮存及运输:

    按照试剂盒标签贮存;常温运输;开封后试剂盒有效期一年。

使用说明:

1. 10% APS配制-5 ml

将0.5 gAPS干粉溶于5 ml灭菌水中,彻底溶解后分装,1 ml/支,-20℃备存,每次取一管使用。10% APS应尽量减少室温存放时间,以防失效。10%APS在4℃有效期为一周,-20℃有效期6个月。若发现凝胶聚合时间延长,应考虑更换使用-20度保存的10%APS。

2. 10×明胶底物配制:

明胶粉末加入30 ml灭菌水,60℃水浴中彻底融化,冷却至常温后使用。明胶底物配制后-20℃贮存。

分离胶制备:

1.1参照凝胶模具说明书,装配好凝胶模具。

1.2按照表格将不同体积的成分在小烧杯中混合;最后加入10%APS和TEMED,轻轻搅拌使其混匀,避免产生气泡。

 

 

10%分离胶

4%浓缩胶

 

 

5 ml

1.6 ml

加入顺序

组份

1.0 mm厚度凝胶

1

10%分离胶聚合溶液A2.5×

2.0 ml

-

2

10%分离胶胶溶液B

2.5 ml

-

3

10×明胶底物

0.5 ml

-

4

4%浓缩胶聚合溶液A

-

0.8 ml

5

4%彩色浓缩胶溶液B

-

0.8 ml

6

10 APS

50 μl

16 μl

7

TEMED

5 μl

1.6 μl

1.3在凝胶模具中灌入适量分离胶溶液(对于mini-gel,凝胶液加至约距前玻璃板顶端1.5 cm或距梳齿约0.5 cm即可),然后在分离胶溶液上轻轻覆盖一层无水乙醇,使凝胶表面保持平整。

1.4静置5-10分钟,待分离胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面后,说明凝胶已聚合

浓缩胶制备:

2.1去除覆盖在分离胶上的乙醇层。

2.2按照表格将不同体积成分在一个小烧杯中混合;最后加入10%过硫酸铵和TEMED,轻轻搅拌使其混匀,避免产生气泡。

2.3将浓缩胶溶液加至分离胶的上面,直至凝胶溶液到达前玻璃板的顶端。

2.4将梳子插入凝胶内,避免产生气泡。

2.5静置30-60分钟,等待浓缩胶聚合(25℃ 标准凝固时间为50分钟)。

注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。可以根据表格标准条件调节催化剂的加入量。

电泳:

3.1 5×Tris-甘氨酸-SDS电泳缓冲液的配制:

   将一包干粉全部倒入1L烧杯中,加入约900 ml水彻底溶解,用水定容至1 L(此溶液不用调节pH值,pH 8.3-8.5)。电泳前将缓冲液稀释5倍即配成1×Tris-甘氨酸-SDS电泳缓冲液。

3.2 样品处理:融化-混合-上样

3.2.1 将5×蛋白上样缓冲液(变性,非还原)常温融化后混匀。

3.2.2 将上样缓冲液与蛋白样品按照1:4的比例混匀。

注:由于MMP活性需要二价阳离子,蛋白样品中避免使用EDTA、EGTA等二价阳离子鳌和剂以及巯基乙醇和DTT等。

蛋白样品提取可以选择RL0120F RIPA裂解液(强,不含抑制剂,不含螯合剂)

3.2.3 快甩离心收集到管底,常温放置5-10分钟,不要加热处理样品,上样电泳。

     胶原酶阳性对照同时上样5-10 μl。

3.3 电泳:

   在电泳槽的内槽加入1×电泳缓冲液,轻轻拨出梳子,冲洗加样孔,随后在电泳槽外槽加入适量的1×电泳缓冲液。上样,恒电压150 V电泳。

电泳条件(一板胶)

恒电压

起始电流

终止电流

电泳时间

可选

150V

30-40mA

8-15mA

50 min+

冰浴电泳

MMP检测:

4.1 漂洗:

取出凝胶,放入容器内,加入50 ml蒸馏水漂洗凝胶,摇床慢摇5分钟,重复一次。

4.2 复性:

4.2.1  1×复性缓冲液配制:

将10×复性缓冲液用蒸馏水稀释10倍,如10 ml 10×复性缓冲液加90 ml蒸馏水。

注:如10×复性缓冲液由于低温贮存有析出时,37℃彻底溶化后再使用。

4.2.2 复性:

取出凝胶,弃蒸馏水,加入50 ml 1×复性缓冲液,摇床慢摇30分钟。

注:复性结束后,凝胶呈乳白半透明状。

4.3 孵育:

4.3.1 1×孵育缓冲液配制:

将10×孵育缓冲液用蒸馏水稀释10倍,如10 ml 10×孵育缓冲液加90 ml蒸馏水。

4.3.2 孵育:

倒掉1×复性缓冲液,加入50 ml 1×孵育缓冲,37℃ 摇床慢摇10分钟;

     弃1×孵育缓冲液,加入 50 ml 1×孵育缓冲,37℃ 摇床慢摇4小时-过夜孵育。

注:阳性对照-胶原酶IV通常37℃孵育3-4小时即可消化凝胶中的明胶。如样品中MMP 活性低,应延长孵育时间至过夜。

4.4 显色:

4.4.1 漂洗:倒掉孵育液,凝胶中加入50 ml蒸馏水,摇床慢摇5分钟,重复一次。

4.4.2 弃蒸馏水,加入50 ml FastBlue染色液(以刚刚覆盖过胶面为适),摇床上常温摇动30分钟-2小时,凝胶大部分区域被深染,在有MMP 条带的位置不被染色而形成透亮区域;蒸馏水漂洗2-3次,每次5-10分钟。

4.5 拍照:

     由于考马斯亮蓝染色,凝胶背景为蓝色,自然光下拍照效果不好。建议使用凝胶观察透射灯(货号:RT3820)底部打光拍照。


五 实验示例:


10%分离胶(含明胶底物)

电泳条件:1×TGS 150V 36-12mA 90 min

实验步骤:

    漂洗:蒸馏水漂洗两次;

复性:50 ml 1×复性缓冲液常温复性30分钟;

              孵育:50 ml 1×孵育缓冲液37度孵育10分钟;

              50 ml 1×孵育缓冲液37度孵育15小时;

漂洗:蒸馏水漂洗两次;

              染色:FastBlue染色60分钟。

              实验结果:胶原酶消化明胶底物,在70-130 kD区间产生明亮条带。


明胶酶谱分析试剂盒

使用该产品发表部分文章列表:

1. [2021 IF=3.5] Salidroside protects against ventilation-induced lung injury by inhibiting the expression of matrix metalloproteinase-9.

Author: Hui Zhang, Wenwen Dong, Siyuan Li, Yunqian Zhang, Zhou Lv, Lu Yang, Lai Jiang, Tao Wu & Yan Wang.

Journal: Pharmaceutical Biology. 2021, VOL. 59, NO. 1, 760–768

Institution Xinhua Hospital, Shanghai Jiaotong University School of Medicine

Paper linkhttps://doi.org/10.1080/13880209.2021.1967409

 

2. [2021 IF=2.73] Synovial mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles alleviate chondrocyte damage during osteoarthritis through microRNA-130b-3p-mediated inhibition of the LRP12/AKT/β-catenin axis.

Author: Zhenhua Zeng, Yi Dai, Shuo Deng, Sanbao Zou, Tingyang Dou & Feng Wei.

Journal: Immunopharmacology and Immunotoxicology. Published in 2022

Institution Department of Pain, the First People's Hospital of Jiashan County, Jiaxing

Paper linkhttps://www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/08923973.2022.2038192

 

3. [2021 IF=4.5] CXCL13 as a Novel Immune Checkpoint for Regulatory B Cells and Its Role in Tumor Metastasis.

Author: Jun Ren, Tianxia Lan, Ting Liu, Yu Liu, Bin Shao, Ke Men, Yu Ma, Xiao Liang,Yu-quan Wei, Min Luo, and Xia-wei Wei

Journal: The Journal of Immunology Published April 18, 2022

Institution West China Second Hospital, Sichuan University

Paper link http://www.jimmunol.org/cgi/doi/10.4049/jimmunol.2100341

 

4. [2021 IF=5.075] Protective Effects of Epigallocatechin-3-gallate (EGCG) against the Jelly?sh Nemopilema nomurai Envenoming.

Author: Jie Li, Qianqian Wang, Shuaijun Zou, Juxingsi Song, Peipei Zhang, Fan Wang, Yichao Huang , Qian He , and Liming Zhang

Journal: Toxins 2023, 15, 283

Institution Naval Medical University

Paper linkhttps://doi.org/10.3390/toxins15040283

 

5. [2021 IF=4.1] ADAMDEC1 induces EMT and promotes colorectal cancer cells metastasis

by enhancing Wnt/β-catenin signaling via negative modulation of GSK-3β.

Author: Yuna Jia, Xiaoyong Huang, Haiyan Shi, MingMing Wang, Jie Chen, Huahua Zhang, Danyang Hou , Hongmei Jing, Juan Du, Huihui Han, Jing Zhang

Journal: Experimental Cell Research 429 (2023) 113629

InstitutionDepartment of Obstetrics, Affiliated Hospital of Yan’an University

Paper link https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2023.113629

 

6. [2021 IF=8.0] Extracellular Vesicles Maintain Blood-Brain Barrier Integrity by the Suppression of Caveolin-1/CD147/VEGFR2/MMP Pathway After Ischemic Stroke.

Author: Yiyang Li, Jiali Chen, Xingping Quan, Ying Chen, Yan Han, Jinfen Chen, Li Yang, Youhua Xu, Xu Shen, Ruibing Wang, Yonghua Zhao

Journal: International Journal of Nanomedicine  2024:19 1451–1467

InstitutionUniversity of Macau

Paper link https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38371456/

 

7. [2022 IF=9.7] Direct contact between tumor cells and platelets initiates a FAK-dependent F3/TGF-β positive feedback loop that promotes tumor progression and EMT in osteosarcoma.

Author: Qianyu Shi, Jiuhui Xu, Chenglong Chen, Xueyu Hu, Boyang Wang, Fanwei Zeng, Tingting Ren , Yi Huang, Wei Guo, Xiaodong Tang, Tao Ji

Journal: Cancer Letters 591 (2024) 216902

InstitutionDepartment of Musculoskeletal Tumor, Peking University People’s Hospital

Paper link https://doi.org/10.1016/j.canlet.2024.216902

 

8. [2022 IF=4.6] Crocin’s role in modulating MMP2/TIMP1 and mitigating hypoxia?induced pulmonary hypertension in mice.

Author: Jing Deng, Rui Qi Wei, Wen Mei Zhang, Chang Yu Shi, Rui Yang, Ming Jin,Chunmei Piao

Journal: Scientifc Reports (2024) 14:12716

InstitutionBeijing Anzhen Hospital Afliated to the Capital Medical University

Paper link https://doi.org/10.1038/s41598-024-62900-8

 


 
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