Bradford蛋白浓度测定试剂盒
名称
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货号
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规格
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Bradford蛋白浓度测定试剂盒
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RTP7101
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1000次(微孔板)
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● 试剂盒内容及保存:
货号
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产品名称
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包装
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贮存方式
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RTP7101-01
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考马斯亮蓝G-250染色液
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200
ml
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4℃
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BSA-01
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牛血清白蛋白(BSA)标准溶液(5 mg/ml)
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2×1 ml
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-20℃
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RT0280-02
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PBS溶液
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10
ml
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4℃
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说明书
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1份
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● 储存条件和效期:
考马斯亮蓝G-250染色液4℃避光保存;牛血清白蛋白标准溶液-20℃贮存。PBS溶液4℃贮存。试剂盒常温运输;本试剂盒有效期1年。
● 产品简介:
Bradford蛋白质浓度测定试剂盒是根据考马斯亮蓝G-250(Coomassie
brilliant blue G-250)法研制而成,其原理是考马斯亮蓝G-250在酸性条件下和蛋白质结合,使得染料最大吸收峰从465 nm变为595 nm,在一定的线性范围内,反应液595 nm处吸光度的变化量与反应蛋白量成正比,测定595 nm处吸光度的增加即可进行蛋白定量。
每个试剂盒可以检测1000个样品(使用微孔板)或60个样品(使用试管)
● 产品特点:
1.
检测速度极快,10个样品只需不足10分钟即可完成。
2.
灵敏度高,检测浓度下限可达25
μg/ml (测定浓度范围在25-1000 μg/ml内有较好的线性关系,最佳测定浓度范围为50-750
μg/ml),最小检测蛋白量可达0.5
μg,待测样品体积为1-20 μl。
3.
Bradford法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响。样品中β-巯基乙醇的浓度可高达1
M,DTT的浓度可高达5
mM。然而,此方法测定蛋白浓度受高浓度的去垢剂影响,故不能适用膜蛋白样品的浓度测定。需确保测定样品中SDS浓度低于0.01%,Triton
X-100浓度低于0.05%,Tween
20, 60, 80浓度低于0.015%。测定含去垢剂的样品推荐使用BCA蛋白浓度测定试剂盒(RTP7102)。
● 操作方法
微孔板测定程序:(最优工作范围50-750 μg/ml)
1. G-250染液在使用前应平衡温度至室温并温和颠倒混匀;
2. 1 mg/ml蛋白标准品配制:常温完全溶解蛋白标准品,取25 μl 5mg/ml BSA蛋白标准溶液,加入100 μl PBS溶液,使其终浓度为1 mg/ml。
3. 按照下表配制BSA标准测定溶液,建议做3个重复:
编号
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0
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1
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2
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3
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4
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5
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6
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7
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1 mg/ml BSA标准溶液 μl
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BSA标准溶液 μl
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0
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1
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1.5
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2
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3
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6
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10
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15
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PBS 溶液 μl
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20
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19
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18.5
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18
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17
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14
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10
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5
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BSA终浓度 μg/ml
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0
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50
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75
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100
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150
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300
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500
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750
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总体积
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20 μl
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4. 将适当体积的待测样品加入到微孔板中,并用PBS补足到20 μl;
5. 向微孔板中加入200 μl G-250染色液,混匀,室温放置5分钟;
6. 测定595 nm 处的吸光值,并记录读数;以不含BSA 的样品的光吸收值作为空白对照。
7. 以BSA含量为纵坐标A595读数为横坐标,绘制标准曲线,计算样品中的蛋白浓度。如果所得到的蛋白浓度不在标准曲线范围内,请稀释样品后重新测定。
试管测定程序:(最优工作范围50-750 μg/ml)
1. G-250染液在使用前应平衡温度至室温并温和颠倒混匀;
2. 1mg/ml蛋白标准品配制:室温完全溶解蛋白标准品,取360 μl 5mg/ml BSA蛋白标准溶液,加入1440 μl PBS溶液,使其终浓度为1.0 mg/ml。
3. 按照下表配制BSA标准测定溶液,建议做3个重复:
编号
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0
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1
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2
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3
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4
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5
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6
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7
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1 mg/ml BSA标准溶液 μl
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BSA标准溶液 μl
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0
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10
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15
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20
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30
|
60
|
100
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150
|
PBS 溶液 μl
|
200
|
190
|
185
|
180
|
170
|
140
|
100
|
50
|
BSA终浓度 μg/ml
|
0
|
50
|
75
|
100
|
150
|
300
|
500
|
750
|
总体积
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200 μl
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4. 将适当体积的待测样品加入到试管中,并用PBS补足到200 μl;
5. 向试管中加入3ml G-250染色液,混匀,室温放置3-5分钟;
6. 测定595
nm 处的吸光值,并记录读数;以不含BSA 的样品的光吸收值作为空白对照。
7. 以BSA含量为纵坐标A595读数为横坐标,绘制标准曲线,计算样品中的蛋白浓度。如果所得到的蛋白浓度不在标准曲线范围内,请稀释样品后重新测定。
实验示例:
引用RTP7101 Bradford蛋白浓度测定试剂盒发表文章
使用该产品发表部分文章列表:
1. [2013 IF=3.5] Identification of Novel
Surface-Exposed Proteins of Rickettsia rickettsii by Affinity Purification and
Proteomics.
Author: Wenping Gong, Xiaolu Xiong, Yong Qi, Jun Jiao, Changsong
Duan, Bohai Wen
Journal: Plos One. June 2014 | Volume 9 |
Issue 6 | e100253
Institution: State Key Laboratory of
Pathogen and Biosecurity, Beijing Institute of Microbiology and Epidemiology
Paper link: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0100253