50×TAE

50×Tris-Actate-EDTA Solution

品名：50×TAE

简介：

TAE 即 Tris acetate-EDTA buffer ，50×TAE是 50 倍浓缩的 TAE，使用时需用蒸馏水稀释 50 倍后再使用，1×TAE工作液中组份浓度：40 mM Tris-acetate，2 mM EDTA，pH8.0。

TAE与TBE的区别：

1. TAE更适合于跑大片段，大于13 kb的片断用TAE分离效果好。TBE更适合于跑小片段，低于1 kb片段TBE效果更好。

2. TAE缓冲能力弱，需要经常更换，长时间电泳不可以选用。TBE有更强的缓冲能力，然而5×或10×TBE贮存容易出现沉淀。

3. 凝胶回收的话用TAE会更好，有文献指出TBE中的硼酸影响回收效率，并且对回收后续连接反应有抑制作用。

保存及效期：

RT保存。有效期2年。

缓冲液TAE与TBE，哪个更好？

TAE和TBE缓冲液都可以用于DNA的琼脂糖凝胶电泳，两者各有利弊，应根据实际情况选择不同的缓冲液。

1×TAE 成分：40 mmol/L Tris-乙酸；2 mmol/L EDTA。实验室一般配成50×TAE。

优点：超螺旋在其中电泳时更符合实际相对分子质量，质量电泳大于13 kb 的片段时分离效果好，可用于回收DNA片段。贮存液可以配成50×的高浓度，方便使用。

缺点：缓冲容量小，缓冲能力弱，长时间电泳（如过夜）不可选用。

1×TBE成分：45 mmol/L Tris-硼酸；1 mmol/L EDTA。实验室一般配成5×或10×TBE。

优点：缓冲能力强，适合较长时间电泳，分辨率较高，电泳小于1kb的片段时分离效果好。

缺点：缓冲液中的硼酸成分会影响 DNA 回收效率以及后续的酶反应实验；贮存液容易沉淀析出。

1. 电导率TBE＞TAE。因此相比于TAE，TBE不太会导致电泳槽内过热的情况发生，长时间电泳推荐使用TBE

2. 硼酸是酶的抑制剂，因此如果你需要分离电泳的DNA用于酶切反应，建议使用TAE作为电泳缓冲溶液

3. TBE对于较小片段的分离效果更好。对于小于300bp的片段，在2%的琼脂糖凝胶上，TBE中的迁移速度更快

4. TAE适用于大片段的分离，大于2kb的片段在TAE中的迁移速度更快（0.8%的琼脂糖凝胶中），速度比在TBE中快出约10%。当片段大于13kb时，一般推荐使用TAE进行电泳分离。

5. TAE更适用于回收DNA片段

6. 相比于TBE，TAE对于超螺旋的DNA分辨率更高